上班前
① 开门注意通风，检查门窗、空调设备、其它电器设备等是否正常。
② 用水注意先把水龙头的水拧开一段时间。
③ 看看今天是否要用烘箱，确定即打开，注意升温情况。
上班过程
① 烘箱、电炉、马弗炉、高压锅等不用即时关掉，无人看守时也必须关掉;
② 经常收拾桌面，清理用过的用具、玻璃仪器等;
③ 经常检查试剂配制使用情况，是否有过期试剂、标准液等;
④ 对于架上试剂瓶经常拭擦以保持干净无灰尘;
⑤ 原始记录必须是实验过程中的实际数据，不能随意涂改，如果对结果有怀疑，也不能划去或撕毁，而在备注注明情况，重新做试验并记录，直到结果满意;
⑥ 原始记录是应统一表格，归档保存，按每月整理收藏，(不常有的原始记录酌情处理);
⑦ 仪器用具分类摆放，用过的仪器用具即时清洗干净，自然晾干(或烘干)，置于指定位置存放，以备后用;(注意尽量不要用前匆匆忙忙清洗仪器用具)。
下班
① 确认未完成试验样品及仪器的安全性;
② 关闭所有电源，培养箱、冰箱除外;
③ 确认关好水龙头;
④ 确认关好所有门窗;
标准液标定注意事项
普通注意事项：
1.各种基准物质烘干的温度要求并不一样;
2. 烘干过程，称量瓶的盖子应置于称量瓶上，倾斜一定角度使半盖状态，不要把盖另置于烘箱板上，这是为了防止有异物从烘箱顶部跌落到样品中，也防止把烘箱板上的异物带入样品中;
3. 样品应置于温度计探头附近;
4. 烘好后，把干燥器移到烘箱边，用夹子等圈住称量瓶，以最短的时间把称量瓶移入干燥器中，盖好干燥器，半个小时内，小心移开干燥器盖少许，以放出部分热空气;
5. 样品冷却后则要称量，不能待太长时间;
6. 称量时始终一个原则，不要让称量瓶吸附到水气、污迹或其它异物，所以直接用手接触称量瓶、用药匙取样品、开着天平门称量甚至呼吸气吹到称量瓶都是不正确的操作;
7. 正确的称量操作应是减量法称量，为什么呢，因为减量法称量，称的是烘好的样品，确保样品大部分时间在天平的干燥环境中;
8. 如果增量法称量，则要确保器皿干燥且外表也须干净，由于是在天平中操作，所以不能碰到器皿以引起天平读数异常，所以操作起来会麻烦很多;
9. 称量过程中，只能用称量瓶盖轻轻敲打称量瓶边缘，使药品均匀落到待测器皿中，敲药时间尽量的短，这要求较熟练的操作;
10. 尽可能的多称几个样品，结果取最可能的数值，舍弃较大和较小的数值。
标准液标定操作关键点：烘干 冷却 称量
还原糖测定注意事项
普通注意事项：
1.碱性酒石酸甲、乙液与还原糖反应是定量关系，它们的多少直接影响测定结果的多少，从而影响检测数据，所以碱性酒石酸甲、乙液必须精确吸取，保证每次取样量一致。
影响碱性酒石酸甲、乙液吸取误差的因素：
(1)碱性酒石酸甲、乙液在吸管中刻度液面的位置要保持一致。
(2)吸管外壁残留的液体多少会造成碱性酒石酸甲、乙液取样量的误差，所以要习惯性的对吸管外壁的碱性酒石酸甲、乙液进行相同处理，保证每次外壁残留液相对一致，从而减少液体取样量的误差。
(3)碱性酒石酸甲、乙液放入三角瓶的速度保持一致(不可吹)，放完后要观察其残留在吸管中有多少，要保证每次残留一致。
(4)碱性酒石酸甲、乙液的不是很明显的沉淀(或浓度变化)也会对测定造成波动，取碱性酒石酸甲液的器具切记不要与碱性物质接触(同时也要注意防止带入碱性物质于甲液中)，以避免甲液产生沉淀，盛甲液的容器时间长了，内壁上也会残留固体(硫酸铜)，这些固体颗粒也会造成检测误差。
2.滴定速度要保持均衡一致，趁热以每2秒一滴的速度滴定为好(速度不要受滴定时间的长短而改变);
3.试样溶液滴定时要进行预测，正式测定时从滴定管滴加比预测体积少1mL的试样溶液至锥形瓶中，控制在2min中内加热至沸，保持沸腾以1滴/2s的速度滴定至终点;
4.电炉的温度对检测结果也有影响，所以要保证电炉充分预热，同时三角瓶在电炉上的放置位置要保持一致;
5.测定时液体沸腾后的开始滴定的时间也要保持一致2min内，一般等液体充分沸腾后开始滴定;
6.滴定终点的判断也要保持一致。等液体蓝色刚好褪去为为滴定终点;
7.糖液稀释及取样也要注意精确，注意吸管正确使用方法;
8.折光糖度精心检测，依此数据辅导还原糖的检测。
9.注意输液胶管漏液、变形，滴定管尖端气泡等对检测数值的影响。
10.三角瓶使用后清洗干净。
有时无法准确找到滴定终点就是由于三角瓶未清洗干净引起的。
还原糖测定关键操作点：
吸取碱性酒石酸甲、乙液
沸腾并维持沸腾2 min
整个滴定过程须控制在2 min内完成
凯氏定氮蛋白质测定注意事项
普通注意事项：
1.原则上样品越少，越容易消化，但样品越少，计量的误差可能性也越大，所以控制到蛋白质含量为0.10g左右，加入0.4g硫酸铜、6g硫酸钾及20mL浓硫酸应是比较合理的消化方法;
2. 变色时因为是缓慢变色，所以可以两种方法计时，一是完全变色后半小时即停止消化，二是刚变色后一个小时停止消化;
3.消化液完全冷却后才能加水、转移、定容，这三个步骤都会导致发热，所以必须确保水溶液最后在定容到刻度时冷却到室温，当然要多次洗涤凯氏烧瓶(即凯氏定氮瓶)以确何转移完全;
4. 消化液最好不要放置过液，需要过夜测定时，请先转移定容好消化液。定容好的消化夜也不能放置时间太久(如几天)才进行蒸馏滴定;
5.蒸馏时，加样液过程可以从容操作，但是加碱后，必须紧密有序，碱的流入过程应是充满整个漏斗口的，在碱还没有放完时就应准备好加水以封住漏斗口，确保蒸发器中已有氨从漏斗口泄漏，而导致结果偏低。
6.加入的氢氧化钠溶液除与硫酸铵作用外，还与消化液中的硫酸和硫酸铜作用，若加入的氢氧化钠不够，则溶液呈蓝色，不生成褐色的氢氧化铜沉淀。所以，加入的氢氧化钠必须过量，并且动作还要迅速，以防止氨的流失;
7. 停止蒸馏时，由于反应室外层的压力突然降低，可使液体倒吸入反应室外层，所以，操作时，应先将冷凝管下端提高液面并清洗管口，再蒸一分钟后关掉热源。蒸馏是否完全，可用精密pH试纸测冷凝管口的冷凝液来测定，中性则说明已蒸馏完全;
凯氏定氮法测定蛋白质的操作关键点：
样品称量入凯氏烧瓶
加碱
附：做蛋白质试验化验室的常见问题有，你犯了几个：
1 没有用长条纸称量;
2 不知道样品精确度是多少，用何种天平称量;
3 直接从原试剂瓶中取药称量;
4 凯氏烧瓶角度不对(应45-60度之间);
5 不固定凯氏烧瓶就进行消化，就是随便挂上去，太危险;
6 消化温度不知如何控制，什么时候该小火，小到多少，什么时候该大火担心不加石棉网会使凯氏烧瓶破裂;
7 不知如何把握凯氏烧瓶以振摇消化液，也没有准备厚手套;
8 不知道过夜保存的应是消化液而不是定容液(消化液定容后应及时蒸馏);
9 第二天发现定容液液面低于刻度时又加水到刻度;
10 标定基准物没有烘到要求温度;
11 以为蒸馏要在通风橱中进行;
12 不知道定氮仪如何装，如何清洗，总是拆下来人工清洗，结果洗不干净又打破了不少零件;
13 不知如何正常使用定氮仪，对后面的操作如清洗、加碱注意事项、蒸馏火力控制等无所适从;
13 对结果没有考虑到要计算干基还是湿基;
14 吸管吸样品液后没有用滤纸把沾在吸管外壁的样液吸干;
15 用吸管去吸标准液加到滴定管中去;
16 没有取下滴定管自然垂直查看刻度;
17 用2000mL的大烧瓶作蒸发器而不作任何固定，危险重重，对用大三角瓶作为蒸发器觉得不可理议;
18 对原始记录管理不到位。
